BV2小鼠小胶质细胞培养要点
BV2小鼠小胶质细胞
该细胞来源于德国DSMZ(German collection of microorganisms and cell cultures),源于C57BL/6小鼠小胶质细胞,表达核v-myc、染色体v-raf癌基因,表面表达envgp70抗原,在形态学、表型及功能上有吞噬细胞的特征。免疫组化结果显示BV2为MAC1、MAC2阳性,而MAC3、胶质细胞原纤维酸性蛋白、半乳糖脑苷脂为阴性。且是高度纯化的永生细胞系,同时该细胞系具备了原代培养的小胶质细胞的形态学、表型以及各项功能特点,相较于原代培养的细胞而言,永生化的细胞系培养起来更为容易。因此目前被广泛的运用于科学研究当中。
细胞特性
1) 来源:小鼠脑
2) 形态:上皮细胞样 松散贴壁,悬浮和贴壁细胞混合生长
3) 含量:>1x106 细胞数
4) 规格:T25瓶或者1mL冻存管包装
5) 用途:仅供科研使用。
一.培养基及培养冻存条件准备:
1) 准备MEM含(NEAA)培养基(推荐使用E2124)/DMEM高糖培养基(E2102);
10%优质胎牛血清(E01011);
1%双抗(E3102);
L-谷氨酰胺 (100x)溶液(E3109).
2) 培养条件: 气相:空气,95%;二氧化碳,5%。 温度:37摄氏度,培养箱湿度为70%-80%。
3) 冻存液:建议使用无血清冻存液(E4111),或90%FBS(E01011)+10%DMSO,现用现配。
二. 细胞处理:
1)冻存细胞的复苏:
将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入到含4-6mL完全培养基的离心管中混合均匀。在1000RPM条件下离心3-5min,弃去上清液,完全培养基重悬细胞。
然后将细胞悬液加入含6-8ml完全培养基的培养瓶(或皿)中37℃培养过夜。第二天显微镜下观察细胞生长情况和细胞密度。
2) 细胞传代:
如果细胞密度达70%-90%,即可进行传代培养。
该细胞为轻微贴壁和少量悬浮培养细胞,传代可以参考以下方法:
1. 收集:将培养瓶中的悬浮的细胞收集到离心管中。用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。由于细胞贴壁不牢PBS润洗后细胞会脱落所以PBS也要回收到离心管中。
2. 加入0.25%胰蛋白酶 (含EDTA)于培养瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL)置于37℃培养箱中消化1-2分钟(难消化的细胞可以适当延长消化时间),然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加入3-4ml含10%FBS(E01011)的培养基来终止消化。
3. 将收集到的悬浮细胞、PBS清洗液中的细胞和消化下来的贴壁细胞以1000rpml离心5min。
弃去上清,补加1-2mL培养液后重悬混匀后将细胞悬液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照说明书要求配置的新的完全培养基以保持细胞的生长活力,后续传代根据实际情况按1:2~1:5的比例进行。
3) 细胞冻存: 收到细胞后建议在培养前3代时冻存一批细胞种子以备后续实验使用。
下面T25瓶为例;
1. 细胞冻存时按照细胞传代的过程收集消化好的细胞到离心管中,可使用血球计数板计数,来决定细胞的冻存密度。一般细胞的推荐冻存密度为1×106~1×107个活细胞/ml。
2. 1000rpm离心3-5min,去掉上清。用配制好的细胞冻存液重悬细胞 ,按每1ml冻存液含1×106~1×107个活细胞分配到一个冻存管中将细胞分配到冻存管中,标注好名称、代数、日期等信息。
3. 将要冻存的细胞置于程序降温盒中,-80度冰箱中过夜,之后转入液氮容器中储存。同时记录好冻存管在液氮容器中的位置以便后续查阅和使用。
三.培养过程中可能遇到的问题及解决方法
1. BV2用MEM(含NEAA)培养可以吗?
答:可以的,这个细胞有两种培养条件,DEME和MEM(含NEAA),所以使用MEM(含NEAA)培养BV2细胞是可行的,但需要确保培养基中含有足够的营养成分,如血清和其他补充物。
如果在使用MEM(含NEAA)过程中遇到生长缓慢或细胞状态不佳的问题,可以考虑调整培养基成分或改为使用DMEM。通过仔细观察和记录细胞生长状态并根据需要调整培养条件,可以确保BV2细胞在DEME或MEM(含NEAA)培养基中的良好生长。
2:BV2细胞形态的问题:培养过程梭型细胞比圆形细胞多,梭型是不是细胞分化了?
答:细胞受到LPS刺激后易分化,而常规培养过程是不会自发分化的。关于哪种形态是分化,并没有统一的定论,有的文献描述分化细胞是长梭型细胞增加,有的文献称分化细胞偏圆形,建议通过检测相关的指标变化来判断是否分化。 该细胞在培养时,高密度下贴壁的细胞形态会偏圆形,低密度下贴壁细胞形态会偏长条形。密度比较高的时候,漂浮的细胞会聚团。存在圆形和梭形两种细胞形态。
3:BV2细胞传代培养时,发现细胞拉丝、触角较多,如何调整?
答:BV2细胞以较低密度传代后,容易出现拉丝、触角较多的情况。这种情况可以先收集培养基中悬浮或贴壁不牢的细胞于15 mL离心管中,贴壁的细胞用胰酶消化1 min左右后终止消化,收集消化下来的的细胞(多触角或者拉丝很长的细胞,短时消化不容易消化下来,可以被筛掉),然后计数传代,培养一段时间后细胞状态会有好转。没有消化下来的细胞也可以提高细胞密度传代,重复此步骤,收集偏圆形的细胞培养。
4:培养细胞的培养瓶可以重复利用吗?
答:一般不建议重复利用,特别是贴壁不牢固细胞,重复利用会导致吸附性变差,漂浮增多;一个T25瓶建议使用最多不超过3次,其次需要注意无菌操作,避免污染。
BV2注意事项:
1.BV2细胞对培养基条件敏感,当培养基出现 过酸或者过碱的情况都会出现脱壁现象,尤其过碱时,会出现快速脱壁现象。
因此在培养过程中需关注细胞培养基的酸碱度,当培养基颜色呈现粉紫色时,PH值大概率偏高,需及时收集培养皿中的悬浮细胞,进行离心换液,更换为新鲜的完全培养基。
若使用的是培养瓶,应注意瓶口是否为透气瓶口,若不是带有透气口的款式,在使用时应拧松瓶口,保证瓶内CO2浓度为细胞正常生长所需浓度。
2.BV2细胞易出现分化现象,分化后的细胞贴壁更牢,极难消化,因此应尽量缩短消化时间,预防细胞分化。
若已经出现严重分化的情况,则可以尝试通过轻柔的吹打将部分细胞吹下来,并悬浮细胞一起收集,无法吹打下来的细胞直接舍弃,从而降低细胞的分化程度。但吹打时也要切记,不可暴力吹吸,避免对细胞造成机械刺激。

*本文涉及到胎牛血清及培养基均来自于evacell品牌
本实验数据及要点仅供参考
ps:以上细胞培养内容全部源于evacell品牌公众服务号
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